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質(zhì)粒構(gòu)建實(shí)驗(yàn)影響因素有哪些?

 更新時(shí)間:2023-10-08 點(diǎn)擊量:807

質(zhì)粒構(gòu)建是指選定的目的外源基因(DNA)先要經(jīng)過PCR擴(kuò)增。隨后用限制性內(nèi)切酶分別切割載體和外源DNA片段,再使用DNA連接酶將切割后的載體與DNA片段連接,轉(zhuǎn)入宿主細(xì)胞。最后經(jīng)過篩選鑒定出正確的重組克隆質(zhì)粒,實(shí)現(xiàn)目的基因在宿主細(xì)胞內(nèi)的正確表達(dá)。那么質(zhì)粒構(gòu)建實(shí)驗(yàn)影響因素有哪些呢?讓我們一起來看看吧!

一、載體的選擇

在選擇克隆載體時(shí)應(yīng)注意以下幾點(diǎn):

①具有自主復(fù)制能力,拷貝數(shù)高;

②攜帶易于篩選的選擇標(biāo)記;

③含有多種限制酶的單一識(shí)別序列,以供外源基因插入;

④載體應(yīng)盡可能小(<15kb),便于導(dǎo)入細(xì)胞和進(jìn)行繁殖;

⑤使用安全??寺≥d體應(yīng)只存在于有限范圍的宿主內(nèi),在宿主體內(nèi)不進(jìn)行重組,不發(fā)生轉(zhuǎn)移,不產(chǎn)生有害性狀,并且不能離開工程宿主自由擴(kuò)散。

二、引物設(shè)計(jì)注意事項(xiàng)

在構(gòu)建質(zhì)粒時(shí),設(shè)計(jì)引物時(shí)應(yīng)該考慮引物長度、引物的GC含量、引物的Tm值等因素,并避免引物間出現(xiàn)配對突變或二次結(jié)構(gòu)等情況。

前向引物:5’端 -- 上游克隆載體末端同源序列 + 基因正向擴(kuò)增引物 --3’端

反向引物:3’端 -- 基因反向擴(kuò)增引物 + 下游克隆載體末端同源序列 --5’端

運(yùn)用PCR擴(kuò)增目的基因的過程中,引物設(shè)計(jì)注意事項(xiàng):

① 引物長度最好在18-30bp左右,常用的長度是 20-22bp;

②引物 Tm 值最好在 60℃ 左右,兩條引物間 Tm 值要保持接近,相差最好不要超過 5°C;

③GC 的含量標(biāo)準(zhǔn)通常為 40%-60% 或45-55%;

④引物自身不應(yīng)含有連續(xù)超過4個(gè)的互補(bǔ)的堿基,避免形成發(fā)卡結(jié)構(gòu)或形成引物二聚體;

⑤引物的3’端要避免出現(xiàn)連續(xù)重復(fù)的堿基,如 GGG 或 CCC ,這會(huì)導(dǎo)致錯(cuò)配的發(fā)生,最后一個(gè)堿基最好是 G 或 C;

⑥在引物的 5’端添加酶切位點(diǎn)時(shí)(在不影響擴(kuò)增的特異性的前提下),根據(jù)酶切位點(diǎn)序列,需要添加不同種類和數(shù)量的保護(hù)堿基,通常多加3個(gè)堿基即可滿足保護(hù)酶切位點(diǎn)的需求;

⑦上下游引物最好加入不同的酶切位點(diǎn),相同的酶切位點(diǎn)可能導(dǎo)致目的基因片段出現(xiàn)倒置連接現(xiàn)象,影響基因序列的正常表達(dá)。

三、酶切位點(diǎn)的選擇

選擇合適的剪切酶和連接酶對于質(zhì)粒構(gòu)建至關(guān)重要。剪切酶的選擇應(yīng)該考慮酶切位點(diǎn)的位置、酶的反應(yīng)條件等因素。連接酶的選擇應(yīng)該根據(jù)所用的質(zhì)粒載體和目的基因的大小來確定。

①選擇質(zhì)粒上兩個(gè)酶切位點(diǎn)的距離不應(yīng)小于太?。?gt;10bp),否則影響限制性內(nèi)切酶對切點(diǎn)的識(shí)別,不利于空載體的雙酶切。

②一般目的基因用于克隆表達(dá)的情況下,酶切位點(diǎn)的選擇要考慮到:

目的基因片段內(nèi)部不含有所選的酶切位點(diǎn)(不然鑒定陽性重組子雙酶切時(shí)會(huì)將目的基因切斷)。

③實(shí)驗(yàn)后繼應(yīng)用的所有載體(真核、原核、酵母、昆蟲)都盡可能含有所選的酶切位點(diǎn)。并且要保證在載體上的插入方向正確(定向克?。#ú蝗粨Q載體表達(dá)時(shí),還要重新設(shè)計(jì)引物,以引進(jìn)新的酶切位點(diǎn))。

④盡可能選比較常用的酶切位點(diǎn)(常用切點(diǎn)酶的價(jià)格比較便宜)。

⑤兩個(gè)酶切點(diǎn)至少隔上3個(gè)堿基。

⑥兩個(gè)酶切點(diǎn)最好不要是同尾酶(切下來的殘基不要互補(bǔ)),否則效果相當(dāng)于單酶切。

⑦最好使用酶切效率高的酶。

⑧最好使用雙酶切有共同buffer的酶。

⑨在操作酶切連接的步驟時(shí)也要定性定量,保證酶活性充足。

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