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親和層析(AC)實驗步驟及注意事項

發(fā)布時間:2023/7/7點(diǎn)擊次數(shù):2165

原理

通過生物分子之間的特異性相互作用來分離物質(zhì)的一種層析方法。包括基于空間結(jié)構(gòu)特異結(jié)合的抗原/抗體,酶/底物、底物類似物、抑制劑、激活劑、輔因子,激素/受體,核酸/核酸結(jié)合蛋白、互補(bǔ)核酸序列,和基于電子的供體和受體相互作用的金屬螯合、嗜硫親和等。該分離純化蛋白的方法高效、簡單、快速、選擇性高。

用途

分離、純化蛋白

材料與儀器

樣品;親和層析柱;結(jié)合緩沖液;洗脫緩沖液。

步驟

準(zhǔn)備層析柱,根據(jù)目標(biāo)蛋白量和填料載量確定柱體積;

準(zhǔn)備樣品,通過過濾或離心除去顆粒性物質(zhì),確保樣品中不含干擾結(jié)合的物質(zhì),根據(jù)不同的親和層析類型調(diào)整上樣緩沖液 pH

上樣前用上樣緩沖液平衡柱子或珠子,柱子需根據(jù)結(jié)合能力強(qiáng)弱確定上樣流速;

孵育,對于親和磁珠需將樣品、抗體、珠子 4℃ 孵育一段時間后再進(jìn)行洗脫;

洗脫,對于組蛋白標(biāo)簽蛋白采用咪唑或低 pH 鹽溶液洗脫、對于 GST 融合蛋白采用含 10-20 mM 還原性谷胱甘肽的溶液洗脫、對于金黃色葡萄球菌蛋白 A 采用低 pH 鹽溶液洗脫;

對于親和層析柱可以用結(jié)合緩沖液重新平衡柱子或用儲存液沖洗柱子,再生利用。

注意事項

1、帶不同標(biāo)簽的待純化蛋白要根據(jù)標(biāo)簽的差異選擇不同的洗脫方法,常用的洗脫緩沖液有高鹽洗脫液、低 pH 洗脫液、還原谷胱甘肽洗脫緩沖液、EDTA 洗脫液等;

2、Ni 親和層析柱可分為 Ni-IDA (螯合三價)Ni-NTA (螯合四價),IDA 載量要比 NTA 高,IDA 與蛋白結(jié)合能力弱、穩(wěn)定性差、Ni易脫落,純化回收 His 標(biāo)簽蛋白選擇螯合鎳更穩(wěn)定、更耐受還原劑、特異性更高的 NTA 層析柱更好;

3、GST 親和層析的條件更溫和、更能保證蛋白活性;

4、純化回收過程中要添加穩(wěn)定蛋白的蛋白酶抑制劑、根據(jù)親和原理合理添加金屬螯合劑、離子穩(wěn)定劑和還原劑。

常見問題

1Ni 柱進(jìn)行蛋白純化需要注意什么?

緩沖液中不能有高濃度的電子供體基團(tuán)、不能有強(qiáng)螯合劑、不能有高濃度強(qiáng)還原劑、不能含離子型去垢劑、避免含碳酸氫鈉等物質(zhì);

2GST 蛋白純化需要注意什么?

避免蛋白樣品超聲太劇烈或時間過長引起的蛋白變性,增加洗脫緩沖液的 pH 值可在不增加還原谷胱甘肽濃度的情況下提高洗脫效率;

3Protein A 純化蛋白需要注意什么?

要保證 Protein G 和抗體有充分的結(jié)合時間,抗體純度不夠會導(dǎo)致雜蛋白含量高、易引起蛋白沉淀。

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